Cultivo de microorganismos

Cultivo de microorganismos:

Materiales:

- Placas de petri
- Medio de cultivo: Agar-Agar
- Estufa de cultivos
- Asa de siembra
- Bacterias ya cultivadas
- Agua de charca
- Mechero de alcohol

Técnica 1:

1. Coger el asa de siembra y ponerlo al fuego durante unos segundos hasta que se ponga al rojo vivo.
2. Tras haber calentado el asa de siembra enfriar tocando el Agar-Agar y rápidamente pasar tocando suavemente las bacterias ya cultivadas y en un medio de cultivo nuevo tocar con el asa de siembra que contiene las bacterias suavemente. (escribir un nombre, un dibujo...)
3. Cerrar el medio de cultivo con la tapa y meter en la estufa durante unos 4 o 5 días a 37 grados centígrados para que las bacterias crezcan y se reproduzcan.

Resultados 1: Las bacterias crecieron por el curso de las letras que escribimos, nuestros nombres.

Medio de cultivo con el nombre de
Oscar escrito con bacterias.

Técnica 2:

1. Coger agua de la charca o del río, preferiblemente sin sedimentos.
2. Verter sobre el medio de cultivo con el Agar-Agar el agua dejar unos segundos y tirar el agua que sobra.
3. Cerrar el medio de cultivo con la tapa y meter en la estufa a 37 grados centígrados durante 4 o 5 días hasta que las bacterias hayan crecido.

Resultado 2: Aparecieron una especie de grumos que se observan muy bien en la imagen de abajo y una especie de purpurina verde. En la placa de petri se observa como las bacterias de la charca han crecido y muy bien.

Bacterias de la charca

Bacterias de río Tormes

Bacterias de la charca vistas al microscopio

Técnica 3:

1. Dejar un medio de cultivo abierto al medio ambiente para que las bacterias que hay flotando por el aire precipiten en el Agar-Agar.
2. Tras pasar unos 15 min cerrar el medio de cultivo y meterlo en la estufa durante 4 o 5 días a 37 grados centígrados.

Resultado 3: 

Bacterias del ambiente.

Técnica 4:

1. Abrir un medio de cultivo y poner sobre el las puntas de los dedos.
2. Cerrar y dejar reposar durante 4 o 5 días en la estufa a 37 grados centígrados. Observar los resultados.

Resultado 4: Tras haber esperado unos cuantos días donde no parecía haber nada han aparecido muchas bacterias.

Puntas de los dedos

 Conclusión de todos los experimentos: Aunque no veamos las bacterias, están ahí y al ponerlas en un medio de cultivo crecen sin control.

Control del crecimiento de las guindillas.

Cultivo de guindillas.

Materiales:

- 16 yogures vacíos
- 48 semillas de guindilla
- Tierra
- Regla
- Regadera o spray

Técnica:

1. Rellenar los yogures con tierra.
2. Hacer un agujero en la tierra y echar tres semillas por yogur y volver a tapar.
3. Regar y esperar hasta que empiecen a crecer. 
4. Medir las plantas dos veces a la semana.

Resultados: Plante las semillas el 18-3-14 y la primera vez que aparecieron fuera de la capa superior de tierra fue el 11-4-14.

(Las gráficas se han hecho tomando los yogures de 4 en 4, osea que cada barra recoge el crecimiento medio de las plantas que contienen esos yogures. Por ejemplo las plantas de los yogures del 1 al 4 medían: 14cm; 7cm; 7,5cm; 3,1cm; 7cm; 5,6cm; 9,2cm. la suma de estas medidas es 53,4cm y como hay 7 plantas he dividido esa medida entre 7 y da 7,63cm y esta medida es la que aparece en la gráfica.)

22-4-14

25-4-14

2-5-14

6-5-14

9-5-14

El día 6-6-2014 trasplantamos las guindillas a tetabricks de leche y cada uno de mis compañeros se llevó unas cuantas plantas para su casa.

Conclusión: las plantas han ido creciendo según iba llegando el verano y por lo tanto según iba mejorando la temperatura. De 48 semillas que planté nacieron 33 así que ha salido todo bien.

Determinación de la mitosis en células de raíz de cebolla.

Mitosis de la raíz de las cebollas.

Materiales:

- Porta
- Cubre
- Pinza
- Tijeras
- Cebolla
- Microscopio
- Papel de filtro
- Vidrio de relo
- Lanceta estéril
- Cubeta de tinción
- Aguja enmangada
- Mechero de alcohol
- Orceina A y B

Técnica:

1. Poner las cebollas sobre un vaso de precipitados con agua y esperar unos días hasta observar que las raíces han crecido lo suficiente
2. Cortar con las tijeras 1 cm aproximadamente del extremo de las raicillas y depositarlo en un vidrio de reloj que contenga unos 2-3 ml de orceina A.

   

   Raíz con orceina A

3. Calentar suavemente el vidrio de reloj a la llama del mechero durante unos 8 minutos, evitando la ebullición.
4. Con las pinzas tomas una de las raíces que estaban en el vidrio e introducirlo en un vaso con agua para limpiar la raíz y ponerlo sobre el papel de filtro para quitarle el agua sobrante. Volver a coger la raíz y ponerlo sobre un porta y echarle dos gotas de orceina B y dejar actuar durante un minuto.
5. Colocar el cubre sobre la raíz. Aplastar suavemente el cubre contra el porta, sin romperlo de modo que la raíz quede extendida
6. Observar al microscopio. 

Resultados: Se observo al microscopio todas las celulas de las raíces pero solo logramos encontrar una raíz en la fase de telofase

Células de la raíz de cebolla

Célula de la cebolla en la fase de telofase
(célula con dos núcleos)

Células de la raíz de cebolla

Conclusión: Las células de las raíces de las cebollas se estaban dividiendo por las raíces crecían, pero al observarlo al microscopio (imágenes de arriba) solo encontramos una célula dividiéndose.

Extracción de la clorofila (Cromatografía).

Extracción de la clorofila y cromatografía.

Materiales:

- Acelgas

- Arena (Abrasivo)

- Alcohol

- Mortero

- Tubos de ensayo

- Papel de filtro

- Embudo 

- Placas de petri

Técnica:

Solución filtrándose

Mortero con acelgas

1. Separar la parte verde de las acelgas de la parte central que es más blanca y no sirve
2. Colocar la parte verde en el mortero y añadir arena como abrasivo para machacar mejor la acelga y extraer la clorofila. Tras haber machacado un poco las acelgas añadir alcohol y seguir machacando.
3. Filtrar la solución con el embudo y el papel de filtro y depositarlo en un tubo de ensayo. Echar un poco de la solución en una placa de petri.
4. Colocar sobre la placa de petri, que contiene la solución de clorofila con alcohol, un trozo de papel de filtro y un trozo de tiza que absorba la solución de clorofila con alcohol y la separe por bandas.
5.  Dejar secar durante unos días para observar las bandas.

Resultados: Aparecieron todas las bandas que se esperaban, unas más marcadas que otras. La clorofila que contiene las hojas verdes se separo en cuatro capas.

                Cromatografía en papel a la izquierda

                Cromatografía en tiza a la derecha

      

    <--Comparación de nuestros resultados-->

Conclusión: Han salido las cuatro bandas esperadas, excepto la banda de xantofila.